Revista Genética Médica y Genómica

Análisis molecular del cromosoma X en familia con diagnóstico de síndrome X frágil

Carolina Monzó1, Carola Guzmán Luján1, Monserrat Aleu Pérez-Gramunt2, Noelia Escartín Alarcón1, Carlos Gil Santiago3, Laura Gandía Artigues1, Francisco Martínez Castellano4, Goitzane Marcaida Benito1, Raquel Rodríguez-López1

Laboratorio de Genética Molecular, Servicio de Análisis Clínicos, Consorcio Hospital General Universitario de Valencia.
Servicio de Pediatría, Consorcio Hospital General Universitario de Valencia.
Unidad de Docencia, Consorcio Hospital General Universitario de Valencia.
Unidad de Genética, Hospital Universitario y Politécnico La Fe.

Autor de correspondencia: Raquel Rodríguez, rodriguez_raqlop@gva.es

INTRODUCCIÓN

El Síndrome del cromosoma X Frágil (SXF; MIM#300624) es la causa hereditaria más prevalente de discapacidad intelectual,  en el 98% de los casos se origina por expansión de tripletes de nucleótidos CGG en el extremo 5’ no codificante del gen FMR1 (Fragile X Mental Retardation-1), situado en el cromosoma Xq27.3. Se considera que los alelos del gen FMR1 son estables cuando contienen hasta 45 repeticiones, el rango de los alelos considerados premutados y sin capacidad para inducir el fenotipo MIM#300624 se establece entre 55 y 200 repeticiones, y cuando el alelo tiene más de 200 repeticiones se considera mutado y que produce la pérdida de función génica, desarrollándose el fenotipo del SXF (Kremer, 1991).

La mutación causal del SXF tiene patrón de herencia ligada al cromosoma X, modificado por la expansión de repeticiones CGG de alelos premutados (paradoja de Sherman). La expansión a mutación por herencia paterna se da muy raramente, normalmente los varones portadores de premutaciones  con más de 80 repeticiones CGG pasan la premutación expandida en 2-54 repeticiones a la siguiente generación, mientras que las descendientes de portadores con menos de 80 CGGs, pueden recibir el alelo contraído en 2-20 CGGs (Nolin, 1996; Snow, 1993). En cambio la transmisión por vía materna se caracteriza por aumentar el número de repeticiones CGG de la premutación, siendo la probabilidad de expansión a mutación directamente proporcional con el tamaño de la premutación (Nolin, 2011). Se ha calculado que cada descendiente de una mujer portadora de premutación tiene sólo un ~0.76 % de probabilidad de heredar un alelo premutado contraído (con menor número de repeticiones) respecto al de su generación anterior (Brown, 1996; Nolin, 1996).

El fenotipo clásico del síndrome incluye discapacidad intelectual moderada (CI 35-40) o grave (CI 20-34), trastornos del comportamiento, déficit de atención, hiperactividad, comportamiento autista y movimientos repetitivos. Los pacientes tienen cara alargada con frente amplia, mandíbula prominente, orejas grandes, hiperlaxitud articular, pies planos, estrabismo y macroorquidismo en varones postpuberales (Loesch, 2004). Aunque los individuos portadores de premutación no desarrollan los signos del SXF, pueden desarrollar fallo ovárico prematuro (MIM #311360; Sullivan, 2011) y síndrome temblor-ataxia (MIM #300623; Jacquemont, 2004).

Tras diagnosticar a un paciente de SXF, se estudió la región de susceptibilidad del gen FMR1 en sus familiares con el objetivo de identificar otros portadores de alelos deletéreos, definir el origen materno o paterno de las premutaciones identificadas y ofrecer consejo genético.

 

DESCRIPCIÓN DE LA FAMILIA

La familia de un paciente de 6 años, diagnosticado de SXF (analizado en otro centro y de cuya muestra no dispusimos) acudió a nuestro laboratorio aportando un informe en el que se refería la existencia de un alelo mutado con al menos 300 repeticiones CGG en el gen FMR1; era hijo de madre colombiana y padre español. Tras obtener consentimiento informado, se amplió el estudio a la familia del paciente (Fig. 1) y se extrajo ADN a partir de muestras de sangre en EDTA de abuela (I-2), madre (II-2), hermano mellizo (III-2) y hermana de diferente padre (III-1). No fue posible obtener muestras para ADN del abuelo materno, ni del padre o familia paterna de la hermana del paciente (III-1). Ambos estaban fallecidos desde la tercera década de la vida, residiendo el resto de los miembros de ambas familias en Colombia.

Figura 1. Árbol genealógico de la familia analizada.

Es destacable la no existencia de signo o síntoma alguno de fallo ovárico en la madre (II-2) que, a la edad de 39 años nos refirió su sexto y último embarazo pasado los 35, habiendo sido dos de ellos gemelares. No hay antecedentes de síndrome de temblor-ataxia en la familia, aunque los portadores obligados de sendos alelos premutados, fallecieron a edades inferiores a las medias de aparición de tales signos en las series estudiadas.

Consejo genético

Se informó a la hermana (III-1) y a la madre (II-2) del paciente diagnosticado de SXF, de su riesgo del 50% de transmitir el cromosoma X con la expansión en el gen FMR1 a cada descendiente. La diferencia de tamaño entre las premutaciones permitió calcular un riesgo de expansión hasta mutación completa del 2% para la hermana (III-1) y del 98% para la madre (II-2), siempre en el caso de transmitir el cromosoma X deletéreo al descendiente (Nolin, 2011). A ambas se les ofreció la opción de diagnóstico prenatal o preconceptivo para sus futuros embarazos.

 

METODOLOGÍA Y RESULTADOS DEL ANÁLISIS MOLECULAR

Se amplificó la región 5’ no codificante del gen FMR1 mediante PCR, utilizando reactivos de ASURAGEN (Kit AmplideX FMR1 PCR). La fluorescencia emitida por los fragmentos obtenidos se detectaron con el secuenciador ABI 3130 DNA Analyzer (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) tras electroforesis capilar, y fueron analizados con el software GeneMapper v.4.0 (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA).

El estudio de repeticiones CGG en la región 5’ no codificante del gen FMR1 en la familia del paciente diagnosticado, identificó a madre (II-2) y hermana (III-1) como portadoras de alelos deletéreos en el rango de premutación de 106 y 60 repeticiones respectivamente (Tabla 1).

Debido a la reducción del número de repeticiones en el alelo premutado que portaba la hermana (III-1) respecto al de su madre (II-2) (y del paciente diagnosticado), hecho disonante con los mecanismos de herencia descritos, realizamos un análisis de segregación o ancestro de los alelos expandidos identificados en ambas. Ante la imposibilidad de estudiar el número de repeticiones CGG en las familias paternas de ambas portadoras, procedimos con un estudio indirecto mediante el análisis molecular de marcadores hipervariables del cromosoma X. Se utilizaron las mismas muestras de ADN extraídas a partir de las muestras de sangre en EDTA remitidas y el estudio se llevó a cabo mediante reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa y fluorescente (QF-PCR). Se utilizó el kit de PCR múltiple Devyser Compact v3 para evaluar los marcadores genéticos hipervariables específicos de cromosoma X: DXS1187, DXS2390 y XHPRT, y marcadores genéticos hipervariables específicos de cromosomas X/Y: DXYS267, DXYS218 y ZFYX. Se utilizó el secuenciador ABI 3130 DNA Analyzer para detectar los fragmentos amplificados, y el software GeneMapper v.4.0 para evaluarlos.

Las señales de fluorescencia detectadas, correspondientes a los fragmentos amplificados, definen los tamaños de los alelos identificados para cada marcador analizado. Correlacionamos los haplotipos con los alelos identificados en FMR1 en el paciente, su hermano mellizo (III-2), su hermana mayor (III-1), su madre (II-2) y su abuela materna (I-2).

La comparación de resultados del estudio de marcadores microsatélites en el cromosoma X de la familia del paciente con SXF (Tabla 1) demostró que la combinación de alelos de los marcadores DXS1187 (147.62 pb), DXS2390 (335.57 pb), XHPRT (290.46 pb), DXYS267 (196.24 pb), DXYS218 (243.29 pb) y ZFYX (163.68 pb), segrega por vía materna con el alelo normal de 29 repeticiones CGG en la región promotora del gen FMR1. Este resultado permite concluir que ambas mujeres, portadoras de premutaciones de 60 y 106 repeticiones CGG, heredaron el alelo deletéreo por sus respectivas vías paternas, por tanto las premutaciones proceden de cromosomas X diferentes.

 

Tabla 1. Alelos del gen FMR1, número de repeticiones CGG y alelos de los marcadores microsatélites analizados en el cromosoma X de cada miembro analizado en la familia.

  Abuela (I-2) Madre (II-2) Hermano (III-2) Hermana (III-1) Localiza. Cr.
Nº de repeticiones CGG 29/28 29/106 29 29/60
Tamaño de fragmentos CGG 316/313 317/550 315 315/412
ZFYX (pb) 136.68_163.29 163.68_163.30 163.68_160.36 163.68_163.68 Xp22.2, Yp11.2
DXYS218 (pb) 243.29_247.23 243.29_243.38 243.29_243.29 243.29_243.29 Xp22.33, Yp11.32
DXYS267 (pb) 196.24_204.69 196.24_196.49 196.24_192.53 196.24_196.24 Xq21.31, Yp11.31
DXS1187 (pb) 147.62_163.5 147.62_151.66 147.62 147.62_139.48 Xq26.2
XHPRT (pb) 290.46_286.17 290.46_286.66 290.46 290.46_286.39 Xq26.2-q26.3
DXS2390 (pb) 335.57_339.31 335.57_327.61 335.57 335.57_331.49 Xq27.1-q27.2

En rojo, haplotipo asociado al alelo de 29 repeticiones CGG en la familia.

En azul, alelos teloméricos de madre e hija no coincidentes del brazo Xq.

En verde, marcadores situados en el brazo Xq, segundo alelo no detectable en varones al no tener regiones homólogas en el cromosoma Y.

 

DISCUSIÓN

La frecuencia en población general de portadores de premutación en el gen FMR1 es de 1:855 en hombres y 1:291 en mujeres (Hunter, 2014). Presentamos la identificación de dos alelos en rango de premutación segregando en cromosomas X diferentes de una misma familia (probabilidad de que ocurra esa situación al azar,  1:248805). Al igual que la madre (II-2) del paciente afectado de SXF, el padre de su única hermana sólo de madre procedía de la misma población pequeña y altamente endogámica colombiana. Sugerimos que la consanguinidad en dicha población pudiera haber facilitado la heredabilidad de segmentos cromosómicos amplios homocigotos, en los que se localizan alelos premutados en el gen FMR1, aumentando así su frecuencia en dicha población. Los cromosomas X que segregan con ambos alelos premutados de la madre (II-2) y la hermana (III-1), proceden de sus respectivos progenitores paternos y pertenecientes al mismo grupo poblacional referido; muestran alelos coincidentes para la combinación de marcadores XHPRT (286 pb), DXYS267 (196 pb), DXYS218 (243 pb) y ZFYX (163 pb), siendo además homocigotas para los alelos de los dos últimos, cuya localización es contigua y telomérica (brazo p) respecto al resto. Los marcadores señalan que los cromosomas X portadores de premutación de la madre (II-2) y la hija (III-1), tienen cierta probabilidad de ser iguales desde el telómero del brazo p hasta la posición Xq26.2; en dicha posición el marcador DXS1187 muestra alelos diferentes para cada una. Estos hallazgos son compatibles con un ancestro común para ambos, apareciendo en esta generación como dos cromosomas derivados diferentes surgidos de una recombinación en este punto (que reconocen los marcadores DXS1187 y DXS2390, ambos bialélicos). En ese caso, ambas premutaciones del gen FMR1 detectadas en la familia podrían haber surgido de un mismo alelo premutado cuyo tamaño habría podido ser modificado tanto por expansiones como por contracciones durante la herencia (Tabla 1).

 

AGRADECIMIENTOS

Carmina Serrano y Arturo Rodríguez Álvarez de la empresa Rafer Innovación Tecnológica para Laboratorio.

 

 

Bibliografía

Brown WT, et al. Reverse mutations in the fragile X syndrome. Am J Med Genet. 1996; 64(2): 287-292.

Hunter J, et al. Epidemiology of fragile x syndrome: A systematic review and meta-analysis. Am J Med Genet A. 2014; 164A(7): 1648-1658. doi: 10.1002/ajmg.a.36511.

Jacquemont S, et al. Penetrance of the fragile X-associated tremor/ataxia syndrome in a premutation carrier population. JAMA. 2004; 29: 460–469. doi: 10.1001/jama.291.4.460.

Kremer EJ, et al. Mapping of DNA instability at the fragile X to a trinucleotide repeat sequence p(CCG)n. Science. 1991; 252(5013): 1711–1714. doi: 10.1126/science.1675488

Loesch DZ, et al. Phenotypic variation and FMRP levels in fragile X. Ment Retard Dev Disabil Res Rev. 2004; 10(1):31-41. doi: 10.1002/mrdd.20006

Nolin SL, et al. Familial transmission of the FMR1 CGG repeat. Am J Hum Genet. 1996; 59(6): 1252-1261.

Nolin SL, et al. Fragile X analysis of 1112 prenatal samples from 1991 to 2010. Prenat Diagn. 2011; 31: 925-31. doi: 10.1002/pd.2815

Snow K, et al. Analysis of a CGG sequence at the FMR-1 locus in fragile X families and in the general population. Am J Hum Genet. 1993; 53(6): 1217-1228.

Sullivan SD, et al. FMR1 and the continuum of primary ovarian insufficiency. Semin Reprod Med. 2011; 24(4): 299-307. doi: 10.1055/s-0031-1280915

Palabras Clave

Síndrome X Frágil, premutación, segregación, FMR1, microsatélites

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